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基质辅助激光解吸/电离

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基质辅助激光脱附时间分辨质谱仪

基质辅助激光脱附电离（英语：Matrix-assisted laser desorption/ionization ，MALDI）是一种用于质谱法的温和离子化技术，可以得到用常规离子化方法容易解离为碎片的一些完整大分子质谱讯息，比如生物分子类的DNA，生物高分子、蛋白质、多肽和糖，以及其他大分子量的有机分子，如高分子、树状分子和其他高分子。在这方面类似于同样是软离子化方法的电喷雾电离（英语：Electrospray ionization）（ESI），不过MALDI更容易得单电荷的离子峰。

MALDI方法过程分为三个步骤。首先，将样品溶液与合适的基质水溶液混合，并取微量混合液体滴置于金属样品板等待干燥。第二步，将脉冲激光照射到样本，引发样品和基质材料的电离和脱附。最后，分析物分子与电离后的基质在脱附过程中进行电荷转移反应，将分析物分子电离。在大多数的生物分子分析上，例如蛋白质及多肽，分析物通常都是以质子化或去质子化形式产生。在MALDI反应之后，所有产生的离子即被金属样品板上的电压加速进入质谱仪来分析[1]。

历史

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主条目：质谱法历史

基质辅助激光脱附电离（MALDI）这个术语是由弗伦茨·希伦坎普（英语：Franz Hillenkamp）（Franz Hillenkamp），迈克尔·卡拉斯（英语：Michael Karas）（Michael Karas）和他们的同事在1985年提出的[2]。这些研究人员发现，氨基酸丙氨酸可以更容易地离子化，如果它被与氨基酸色氨酸混合，并用266纳米的脉冲激光照射。吸收激光能量的色氨酸能帮助非吸收性的丙氨酸被离子化。当与这种“基质”混合，高达2843Da的溶血肽（英语：Melittin）多肽都可以被离子化。真正突破大分子量蛋白质的电离技术则是在1985年初，由在岛津制作所工作的田中耕一和他的同事使用被他们称为“超细金属加液体基质方法”，以混合30纳米钴颗粒在甘油中，并用337纳米的氮激光进行电离[3]。使用这种激光和基质组合，田中耕一能够电离高达34472Da的蛋白羧-A分子，而此方法后来被称为软激光脱附法（Soft Laser Desorption，简称SLD）。2002年，约翰·贝内特·芬恩与田中耕一因各自开发出ESI与SLD方法，而共享一半的诺贝尔化学奖[4]。随后，卡拉斯和希伦坎普使用尼克酸（nicotinic acid）基质和一个266纳米的激光能够电离67 kDa蛋白质白蛋白（albumin）.[5]。进一步改进是通过使用355纳米的激光和肉桂酸衍生物阿魏酸，咖啡酸和芥子酸作为基质实现。由于337纳米波长运行的小型和相对廉价的氮激光出现，在1990年代初期推出的第一款商业仪器把MALDI仪器带给了越来越多的研究人员[6]。今天，大部分被用于MALDI质谱分析的基质都是有机化合物。

应用

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生物化学

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在蛋白质组学中，MALDI用于快速鉴定通过凝胶电泳分离的蛋白质：SDS-PAGE，大小排除层析法（英语：Size-exclusion chromatography），亲和层析，强/弱离子交换，同位素编码蛋白标记（ICPL）和双向电泳。 肽质量指纹识别（英语：Peptide mass fingerprinting）是MALDI-TOF质谱仪最流行的分析应用。 MALDI TOF / TOF质谱仪用于揭示肽的氨基酸序列，使用源后衰变或高能碰撞诱导的解离（英语：Collision-induced dissociation）（进一步使用参见质谱法）。

MALDI-TOF已用于表征翻译后修饰。例如，它已被广泛应用于研究蛋白质甲基化和去甲基化。但是，在研究MALDI-TOF的翻译后修饰时必须小心。例如，据报导，当二羟基苯甲酸(DHB)用作糖基化肽的MALDI MS分析的基质时[7][8]，唾液酸的损失已在论文中确定，S. Martin使用芥子酸、4-HCCA和DHB作为基质，研究了MALDI/TOF在线性模式和反射模式[9]下亚稳态衰减导致糖基化肽中唾液酸的损失。 Shimadzu Corporation的一个小组通过酰胺化反应衍生唾液酸[10]，以此提高检测灵敏度，并证明离子液体基质可减少唾液酸化寡糖MALDI/TOF MS分析过程中的唾液酸损失[11]，THAP[12]、DHAP以及2-aza-2-thiothymine和苯肼的混合物已被确定为基质，可用于在糖基化肽的MALDI MS分析过程中最大限度地减少唾液酸的损失。据报导，如果使用IR MALDI 代替UV MALDI，可以减少一些翻译后修饰的损失。

除了蛋白质，MALDI-TOF也被用于研究脂质。例如，它已被用于研究磷脂酶的催化反应。除脂质外，寡核苷酸也已通过MALDI-TOF进行了表征。例如，在分子生物学中，5-甲氧基水杨酸和精胺的混合物可用作MALDI质谱法中寡核苷酸分析的基质，例如在寡核苷酸合成之后。

有机化学

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一些合成大分子，例如索烃和轮烷，树状物和超支化聚合物，以及其他组件，具有延伸到数千或数万的分子量，其中大多数电离技术难以产生分子离子。 MALDI是一种简单快速的分析方法，可以让化学家快速分析这些合成的结果并验证其结果[来源请求]。

聚合物

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在高分子化学中，MALDI可用于确定摩尔质量分布（英语：Molar mass distribution）[13]。 分散度（英语：Dispersity）大于1.2的聚合物很难通过MALDI进行表征，原因是信号强度与较高质量的低聚物有所区别[14][15][16]。

聚合物的良好基质是二乙醇（英语：Dithranol）[17]或三氟乙酸银(AgTFA)[18]。 样品必须首先与二乙醇混合，然后添加AgTFA。 否则样品将从溶液中沉淀出来。

微生物学

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MALDI/TOF光谱用于鉴定微生物，例如细菌或真菌。 将一部分微生物菌落放在样品靶标上，并覆盖基质。 生成的质谱图通过专用软件进行分析，并与存储的配置文件进行比较。 通过该程序进行的物种诊断比基于免疫学或生化测试的其他程序更快，更准确且更便宜。 MALDI/TOF正在成为医学微生物实验室中进行物种鉴定的标准方法[19][20]。

与其他微生物鉴定方法相比，一个主要优点是它能够以低成本直接，可靠地从用于分离它们的选择性培养基中鉴定出多种微生物。 无需纯化可疑或“推测性”菌落[21]，可大大缩短周转时间。

另一个优点是可以预测细菌对抗生素的敏感性（英语：Antibiotic sensitivity）。 单个质谱峰可以预测金黄色葡萄球菌的耐甲氧西林(methicillin resistance)[22], MALDI还可以检测耐碳青霉烯的肠杆菌科的碳青霉烯酶[23]，包括鲍氏不动杆菌[24]和克雷伯氏肺炎菌[25]。 但是，大多数介导抗生素抗性的蛋白质的蛋白质峰解释范围都大于MALDI-TOF的2000–20,000 Da范围，并且仅偶尔出现，如在2011年NIH的KPC暴发中，可以得出峰值与赋予耐药性的蛋白质之间的相关性[26]。

寄生虫学

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MALDI/TOF光谱已被用于检测和鉴定各种寄生虫，例如锥虫[27]，利什曼原虫[28] 和疟原虫[29]。 除了这些单细胞的寄生虫外，MALDI/TOF还可以用于鉴定寄生昆虫，例如虱子[30]或尾虫（cercariae），即吸虫的自由游动阶段[31]。

医学

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MALDI/TOF光谱通常与其他分析和光谱技术一起用于疾病的诊断。 MALDI/TOF是一种很有潜力的诊断工具[32]，因为它可以快速鉴定蛋白质和蛋白质的变化，而无需测序的成本或计算能力，也不需要解决X射线晶体学中晶体结构所需的技能或时间[33][34]。

参考资料

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参看

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外部链接

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